A anatomia patológica, ciência derivada da medicina e patologia que tem por finalidade diagnosticar lesões a nível estrutural. A especialidade consiste na análise crítica e criteriosa de tecidos enviados ao laboratório. Sendo assim, por ser uma área da patologia, se estuda as estruturas desde o nível microscópico até o macroscópico. Portanto, considerada uma área de fundamental, visto que, a partir dessa ciência que se obtêm os laudos, desde as doenças até o atestado de óbito. Logo, veremos mais adiante sobre os corantes utilizados na anatomia patológica.
Saiba os conceitos básicos de biópsia nesse artigo.
Corantes para papanicolau
Utilizado para coloração de células colhidas por raspagem em cavidades naturais (vagina, mucosa bucal, etc.). Desse modo, alternitavemente usado em concentrados celulares a partir de derrames cavitários.
Essa coloração, necessita algumas etapas para o sucesso.
Hidratação
Afim de se evitar distorções, os esfregaços que foram fixados em álcool 95% ou em álcool-éter devem ser hidratados gradualmente. Desse modo, passando-se através de álcoois misturados com água destilada, com gradativo aumento de água, até atingirmos a água pura. Sendo assim, antes de serem corados pela hematoxilina. Portanto, essa fase prepara o núcleo para receber a hematoxilina que é um corante em solução aquosa.
Fase de corantes no núcleo
Nesta técnica, a hematoxilina de Harris é usada regressivamente, isto é, as células são coradas em excesso. Sendo assim, são descoradas por uma solução aquosa para se obter a profundidade desejada para a cor do núcleo e para remover o excesso de corante do citoplasma. Desse modo, a água corrente neutraliza o núcleo e este se tornará azul-escuro ou roxo.
O tempo na hematoxilina é de 3 a 5 minutos . É recomendável filtrar a hematoxilina antes e depois do uso. Este corante, usado para o núcleo e a membrana nuclear, que tomam coloração idêntica. Contudo o núcleolo se cora frequentemente em rosa, vermelho ou laranja, um pouco mais tarde.
Fase de desidratação
As células devem ser desidratadas por uma conduta reversa à que antecedeu a hematoxilina afim de serem conduzidas aos corantes citoplasmáticos. Desse modo, o motivo desta desidratação é que tais corantes são soluções alcoólicas. No entanto, que no primeiro passo houve hidratação, porque a hematoxilina é uma solução aquosa.
Fase de corantes no citoplasma
Os corantes utilizados neste estágio são soluções alcoólicas que irão produzir a transparência desejada no citoplasma corado. Desse modo, células que possuam o citoplasma acidófilo demonstrarão afinidade pela eosina. Sendo assim, aquelas que possuem o citoplasma basófilo se coram em azul pálido ou azul esverdeado, pelo verde luz que é um corante básico. Portanto, nessa última fase, todos os resquícios de água devem ser removidos através de subsequentes lavagens em álcool 100%.
Passo a passo
- • Deixar pelo menos 10 minutos num Becker com álcool 95 %
- • Lavar em água corrente
- • Corar com a Hematoxilina por 3 a 5 minutos
- • Lavar em água corrente
- • Deixar 20 segundos num Becker com Eosina amarela.
- • Passar por 3 ou 4 Beckers com álcool 95%
- • Corar com o EA 36 por 5 minutos
- • Passar por uma sequência de 5 álcoois Passar por uma sequência de 3 xilois
Outros corantes
Algumas substâncias intra e extracelulares promovem a redução do nitrato de prata que formam precipitados negros em estruturas como fibras reticulares dos linfonodos, por exemplo.
Gomori Grocott
A impregnação pela prata detecta glicogênio e mucina. Desse modo, os resultados são que, utilizando esta coloração, os fungos aparecem com limites bem precisos em negro. Sendo assim, a mucina aparece em castanho a cinza escuro, a parte interna de hifas e micélios em rosa-escuro e a coloração de fundo em tom de verde-pálido.
PAS (Periodic-Acid-Schiff)
Para demonstrar glicogênio. Desse modo, utiliza como fixador uma solução de formalina neutra, tamponada a 10% e os tecidos devem ser cortados em parafina de 5 micras. Sendo assim, as soluções podem ser: solução de ácido clorídrico normal, solução de Feulgen e Coleman, solução de Schiff, solução de ácido periódico a 0,5%, solução de verde luz a 0,2% ou solução de verde luz.
Localização de lipídios
Para a localização de lipídios, são utilizados corantes que possuem alto grau de dissolução em gorduras. Sendo assim, os corantes, misturados com uma solução alcoólica saturada pela qual possuem baixo grau de dissociação. Desse modo, colocados em contato com o tecido e então transferem-se da solução alcoólica para os lipídios. Portanto, os principais exemplos de corantes específicos para lipídios são o Sudan IV e o Sudan Negro.
Portanto, gurunauta, se esta afim de conhecer mais sobre a anatomia patológica, não deixe de acompanhar nosso blog. Pois nessa seção, você verá imagens e assuntos pouco abordados em sala de aula, que vão te auxiliar na sua vida acadêmica. Te espero aqui, mete bronca!!
