Aula Pratica - Preparacao e Coloração de Lâminas Biológicas

10 OBS TOTAL DE 6 AULAS AULA PRÁTICA Nº 01 Materiais lâminas de vidro para microscopia o lamínulas de vidro para microscopia o álcool 70 o Swab bucal o papel toalha o azul de metileno 05 o água destilada pisseta o Pipeta pasteur o Microscópios biloculares 10 Procedimento experimental 1 Com um palito de picolé ou swab raspar levemente a parte interna da bochecha 2 Fazer um esfregaço espalhando sobre uma lâmina de vidro o material raspado da bochecha 3 Fixar o material mergulhando a lâmina com o esfregaço em álcool 90 Aguardar 15 minutos 4 Retirar a lâmina do álcool e escorrer o excesso de líquido em um pedaço de papel filtro 5 Colocar a lâmina sobre a bancada e pingar sobre a região do esfregaço uma gota de azul de metileno Aguardar 2 minuto 6 Com o auxílio de uma pisseta remover o excesso de azul de metileno jogando sobre a lâmina um jato de água 7 Com o auxílio do frasco contagotas pingar uma gota de água sobre a região do esfregaço Cobrir a preparação com uma lamínula 8 Retirar as bolhas de ar pressionando levemente a lamínula com a pinça 9 Colocar a preparação dentro de um pedaço de papel filtro dobrado Pressionar levemente para retirar o excesso de líquido 10 Observar ao microscópio o material usando a objetiva de 4x de 10x e em seguida a de 40x Girar vagarosamente o micrométrico para obter o melhor foco Fazer um desenho das células observadas 10 AULA PRÁTICA Nº 02 1 Com o auxílio de uma espátula fazer a raspagem nas bochechas e passar na lâmina 2 Colocar imediatamente no álcool Aguardar 15 minutos para fixação Coloração 3 Após a fixação mergulhar a lâmina na água destilada por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 4 Com o auxílio de uma pipeta de pasteur colocar a hematoxilina e deixar por 4 minutos 5 Lavar o excesso de corante com água corrente delicadamente 6 Mergulhar a lâmina no álcool por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 7 Com o auxílio de uma pipeta de pasteur colocar o Orange G e deixar por 2 minutos 8 Mergulhar a lâmina no álcool por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 9 Mergulhar a lâmina no álcool por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 10 Com o auxílio de uma pipeta de pasteur colocar o corante EA e deixar por 2 minutos 11 Mergulhar a lâmina no álcool por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 12 Mergulhar a lâmina no álcool por 30 segundos ou fazer vários mergulhos 13 Deixar secar em temperatura ambiente Após a secagem completa colocar algumas gostas de verniz e lamínula AULA PRÁTICA Nº 03 Células Epiteliais do colo uterino Reconhecimento das células escamosas glandulares e metaplásicas 10 AULA PRÁTICA Nº 04 Microscopia Reconhecimento das alterações celulares ceratóricas e reativas Primeira parte da aula explicação do slide AULA PRÁTICA 05Microbiota 280323 Segunda parte da aula análise descrição da lâmina abaixo 10 AULA PRÁTICA Nº 05 Microscopia Reconhecimento da microbiota cérvicovaginal Primeira parte da aula análise e descrição das lâminas do arquivo análises citológicas e biotecnologia REALIZAR A DESCRIÇÃO DAS LÂMINAS DESSE ARQUIVO TAMBÉM Segunda parte da aula análise e descrição de 7 lâminas no microscópio 10 AULA PRÁTICA Nº 06 Diagnóstico diferencial das lesões prémalignas ASCUS ASCG AGC Neo AGC Não Neo Laudos Primeira parte da aula explicação do slide Lesões Pré malignas e invasoras do colo uterino Segunda parte da aula análise das lâmina abaixo 1 Para cada resultado citológico apresentado descreva Adequação da amostra Descrição dos resultados e interpretação ATIVIDADE DIRIGIDA PROFESSORAS DATA UNIDADE CURRICULAR ANÁLISES CITOLÓGICAS image of stained cells with various shapes and colors including pink red orange purple and blue cells on a white background image of stained cells with various shapes and colors including pink purple and blue cells on a white background image of stained cells with various shapes and colors including pink red blue and purple cells on a white background